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| MOQ: | 키트 5개 |
| 가격: | 협상 가능 |
| 표준 포장: | 색 포장 |
| 배달 기간: | 5~7일 |
| 지불 방법: | T/T |
| 공급 능력: | 한 달에 100개 키트 |
레건TM푸랄타돈 (Furaltadone) (AMOZ) ELISA 테스트 킷은 물고기, 새우, 고기, 쇠고기, 돼지고기 및 간), 달걀, 꿀에서 푸랄타돈의 정량 분석을 위한 경쟁적인 효소 면역 검사를 제공합니다.
빠른 (4시간), 높은 회복 (80-105%) 및 다양한 샘플에 대한 비용 효율적인 추출 방법.
높은 민감도 (0.05 ng/g 또는 ppb) 및 낮은 검출 한계 (0.1 ng/g 또는 ppb) 는 다양한 표본에 있습니다.
높은 재생 가능성
빠른 ELISA 분석 (시각의 수와 상관없이 1시간 미만)
이 방법은 경쟁적인 컬러 미트릭 ELISA 분석을 기반으로 합니다. AMOZ-BSA는 판 우물 안에 코팅되었습니다. 분석 중에,샘플과 AMOZ 항체가 2차 항체와 함께 추가됩니다.만약 AMOZ 잔해가 샘플에 존재한다면 AMOZ 항체를 위해 경쟁하게 됩니다.따라서 항체가 우물에 부착된 AMOZ-BSA에 결합하는 것을 방지합니다.HRP 기판 (TMB) 을 추가 한 후 발생하는 색상 강도는 샘플의 AMOZ 잔류 농도와 역 관계를 가지고 있습니다.
레건TM푸랄타돈 (AMOZ) ELISA 테스트 킷은 96개의 결정 또는 42개의 샘플을 두 배로 검사할 수 있습니다. (표준을 위해 12개의 웅덩이를 가정합니다.)사용되지 않은 미크로 웰을 포일 봉지에 넣고 원래 패키지에 제공된 건조제로 다시 봉인합니다.2~8°C의 온도에서 보관합니다.
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키트 내용 |
금액 |
저장 |
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AMOZ 코팅판 |
1 x 96 우물 판 (8 우물 x 12 스트립) |
2-8°C |
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AMOZ 표준: 부정적 통제 (백색 캡 튜브) 0.0 5ng/mL (노란 캡 튜브) 0.15ng/mL (오렌지색 캡 튜브) 0.45 ng/mL (핑크 캡 튜브) 1.35 ng/mL (포르풀 캡 튜브) 4.05 ng/mL (블루 캡 튜브) 10 ng/mL (spiking, optional, red cap tube) |
1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL |
2-8°C
2-8°C |
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AMOZ 항체 (항체#1) |
4mL |
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HRP 결합 항체 #2 |
6mL |
2-8°C |
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10X 샘플 추출 버퍼 |
25ml |
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20X 세탁 용액 |
28mL |
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정지 버퍼 |
20mL |
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TMB 서브스트레이트 |
12mL |
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50mM 2-나이트로벤자알데히드 |
20.0 mL |
* 1 개월 이상 키트를 사용하지 않을 경우 항체 # 1 및 HRP 결합 항체 # 2를 - 20 ° C 또는 냉장고에 보관하십시오.
감수성 (탐지 한계)
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표본 종류 |
탐지 한계(ng/g 또는 ppb) |
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생선/삼각류 |
0.1 |
|
고기 (닭고기, 쇠고기, 돼지고기 및 가축) |
0.1 |
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달걀/ 달걀 용량 |
0.1 |
|
아가씨 |
0.1 |
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분석물질 |
교차 반응성(%) |
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아모스 |
100 |
|
AOZ |
<0.04 |
|
AHD |
< 0.06 |
|
SEM |
< 0.05 |
1미크로타이터 판 판독기 (450nm)
2인큐베이터
3튜브 믹서 (예를 들어 Omni TissueMaster 호모게니저)
4회전 증발기 또는 질소 가스
5.버텍스 믹서 (예를 들어, VWR의 Gneie Vortex 믹서)
6.10, 20, 100 및 1000 mL 파이펫
7다채널 파이펫: 50~300ml (선택)
8에틸 아세테이트
9.0.1 M K2HPO4
10n-헥산 (또는 n-헤프탄)
11.1M NaOH
12.1M HCL
표준에는 푸랄타돈이 들어 있어 조심해
유효기간이 지나면 사용하지 마십시오.
유효기간 내에 동일한 부품 번호가 있는 성분을 제외하고는 다른 키트 또는 롯의 반응제를 섞지 마십시오. 항체와 판은 키트 및 롯 특이입니다.
실험실 온도는 20°~25°C (68°~77°F) 를 유지하도록 노력하십시오. 이는 과도한 냉각, 난방 및/또는 증발을 유발할 수 있으므로 공기 통출장소 아래 또는 근처에서 테스트를 실행하지 마십시오. 또한,직접 햇빛 아래에서 테스트를 실행하지 마십시오.이것은 과도한 열과 증발을 일으킬 수 있기 때문입니다.추운 벤치 윗부분은 잠복 중에 표본 타울 또는 다른 고충 물질의 여러 층을 시험판 아래에 배치함으로써 피해야 합니다..
물의 질이 매우 중요하기 때문에 증류 된 물 또는 비이온화 된 물만을 사용하는지 확인하십시오.
표본이나 반응제를 빈 미크로티터 판에 삐펫으로 넣을 때, 삐펫 끝을 우물 아래쪽 구석에 배치하여 플라스틱과 접촉합니다.
검사판의 잠복 시기는 가능한 한 정확해야합니다. 검사판에 표준을 추가 할 때 일관성있게하십시오. 먼저 표준을 추가하고 샘플을 추가하십시오.
표준 곡선을 손상시킬 위험을 최소화 할 수 있으므로 낮은 농도에서 높은 농도로 순서대로 판에 표준을 추가하십시오.
항상 안정성 을 유지 하기 위해 접시 를 밀폐 된 봉지 에서 건조제 로 냉장 보관 합니다.접시에 있는 동안 방온 (20°C / 68°F) 에 평형되도록 함으로써 접시에 응고가 형성되는 것을 방지합니다..
표본이 적절하게 보관되어 있는지 확인하십시오. 일반적으로 표본은 2-4°C에서 1-2일 이상 냉장 보관해야합니다. 샘플이 더 오래 보관해야하는 경우 최소 -20°C로 냉장합니다.냉동 샘플은 방 온도 (20°C / 68°F) 에서 또는 냉장고에서 사용 하기 전에 녹일 수 있습니다..
1x 샘플 추출 버퍼의 0.5 mL, 증류 물의 3.5 mL, 1 M HCl의 0.5 mL 및 50 mM 2-나이트로벤자알데히드의 20 mL와 동화된 샘플의 1 g를 30 초 동안 소용돌이로 섞는다.
3시간 동안 50°C~55°C에서 잠복합니다. 잠복하는 동안 매 시간마다 5초씩 샘플을 구동합니다.
0.1 M K2HPO4, 0.4 mL 1 M NaOH 및 6 mL 에틸 아세테이트의 5 mL를 첨가하고, 2 분 동안 소용돌이.
방온 (20°C ~ 25°C) 에서 4천 xg에서 5분 동안 원심분리합니다.
에틸 아세테트 초산화물 3 ml (원래 샘플의 0.5 g에 해당) 를 새로운 병에 옮기십시오.추출된 에틸 아세테이트를 4에서 5분 동안 원심화합니다., 000 x g 다시 그리고 상위 유기 층을 얻습니다. 에뮬션이 발생하고 상위 에틸 아세테트 층이 3 ml 미만인 경우 샘플을 85 °C에서 3 분 동안 물 목욕에 잠겨 두십시오.회전 증발기를 사용하여 60-70°C의 수분 목욕장에서 압력을 줄여 샘플을 건조합니다.대안으로, 샘플은 60-70°C의 물 욕조에 질소 가스를 불어 건조 할 수 있습니다.
마른 잔액은 1 ml의 n-헥산 (또는 n-헤프탄) 에 녹여야합니다.
1 ml를 첨가합니다.1X표본 추출 버퍼, 2분 동안 표본을 구동합니다.
샘플을 4,000 x g에서 방온에서 10분 동안 원심분리합니다 (20 ∼ 25°C / 68 ∼ 77°F).
검사용으로 하층 수분층의 50mL를 분자당 사용한다.
참고:희석 요인: 2. 높은 배경을 피하기 위해 용매 빈 샘플을 병렬로 준비하는 것이 좋습니다.에틸 아세테이트의 3 mL를 건조한 상태로 줄여서 휴식 추출 절차를 계속합니다.용매 제어 결과 를 샘플 결과 로부터 빼기
동질화된 표본의 1g를 0.5mL의 1X 샘플 추출 버퍼, 3.5mL의 증류 물, 0.5mL의 1mL HCl 및 20mL의 50mM의 2-질로벤자알데히드로 30초 동안 분화하여 섞는다.
3시간 동안 50°C~55°C에서 잠복합니다. 잠복 기간 동안 매 시간마다 5초씩 샘플을 구동합니다.
0.1 M K2HPO4, 0.4 mL 1 M NaOH 및 6 mL 에틸 아세테이트의 5 mL를 첨가하고, 5 분 동안 소용돌이.
4,000 x g에서 5분 동안 방온에서 원심분리 (20°C / 68°F).
에틸 아세테트 초산화물 3.0 ml (원래 계란 샘플의 0.5 g에 해당) 를 새로운 수포로 옮기십시오.추출된 에틸 아세테이트를 4에서 5분 동안 원심화합니다.1000 x g 다시 상층 유기 층을 얻습니다.) 회전 증발기를 사용하여 60-70 °C의 수분 목욕탕에서 압력을 줄이십시오.표본은 60-70°C의 물 욕조에 질소 가스를 불어 건조할 수 있습니다..
마른 잔액은 1 ml의 n-헥산 (또는 n-헤프탄) 에 녹여야합니다.
1 ml를 첨가합니다.1X샘플 추출 버퍼와 2 분 동안 샘플을 구동.
샘플을 4,000 x g에서 방온에서 10분 동안 원심분리합니다 (20 ∼ 25°C / 68 ∼ 77°F).
검사용으로 하층 수층의 50 ml를 분자당 사용한다.
참고:: 희석 요인: 2. 높은 배경을 피하기 위해 용매 빈 샘플을 병렬로 준비하는 것이 좋습니다.에틸 아세테이트의 3 ml를 건조한 상태로 줄이면서 휴식 절차를 계속합니다.용매 제어 결과 를 샘플 결과 로부터 빼기
계란 샘플의 1g를 0.5 ml의 1X 샘플 추출 버퍼, 3.5 ml의 증류 물, 0.5 ml의 1 M HCl 및 20 ml의 50 mM 2-나이트로벤잘데히드로 혼합하여 2분 동안 회전합니다.
3시간 동안 50°C~55°C에서 잠복합니다. 잠복하는 동안 매 시간마다 5초씩 샘플을 구동합니다.
5mL의 0.1 M K2HPO4, 0.4 mL의 1 M NaOH 및 6 mL의 에틸 아세테이트를 첨가하고, 최대 속도로 5 분 동안 소용돌이를 합니다.
방 온도에서 10분 동안 4,000 x g에서 원심분리 (20°C / 68°F).
에틸 아세테트 초산화물 3.0 mL (원래 꿀 샘플의 0.5 g에 해당) 를 새로운 병에 옮기십시오.추출된 에틸 아세테이트를 4에서 5분 동안 원심화합니다.1000 x g 다시 상층 유기 층을 얻습니다.) 회전 증발기를 사용하여 60-70 °C의 수분 목욕탕에서 압력을 줄이십시오.표본은 60-70°C의 물 욕조에 질소 가스를 불어 건조할 수 있습니다..
마른 잔액은 1 ml의 n-헥산 (또는 n-헤프탄) 에 녹여야합니다.
1 ml를 첨가합니다.1X표본 추출 버퍼와 2분 동안 소용돌이
샘플을 4,000 x g에서 방온에서 10분 동안 원심분리합니다 (20 ∼ 25°C / 68 ∼ 77°F).
50 ml의 하층 수분층을 검사용으로 사용한다.
참고:: 희석 요인: 2. (1) 에틸 아세테트 추출물의 증발 후, 생성된 잔류는 완전히 녹지 않습니다. 그러나 회복률은 손상되지 않습니다 (> 80%).(2) 이 용품의 경우, 우리는 긍정적 인 표본에 대한 표준 0.5 ng/g 또는 ppb를 절단 값으로 사용하는 것이 좋습니다. 부정적인 표본은 상당한 배경 효과를 나타낼 수 있기 때문에 (일부 경우 표준 0.05 ng/g 및 0.15 ng/g)
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| MOQ: | 키트 5개 |
| 가격: | 협상 가능 |
| 표준 포장: | 색 포장 |
| 배달 기간: | 5~7일 |
| 지불 방법: | T/T |
| 공급 능력: | 한 달에 100개 키트 |
레건TM푸랄타돈 (Furaltadone) (AMOZ) ELISA 테스트 킷은 물고기, 새우, 고기, 쇠고기, 돼지고기 및 간), 달걀, 꿀에서 푸랄타돈의 정량 분석을 위한 경쟁적인 효소 면역 검사를 제공합니다.
빠른 (4시간), 높은 회복 (80-105%) 및 다양한 샘플에 대한 비용 효율적인 추출 방법.
높은 민감도 (0.05 ng/g 또는 ppb) 및 낮은 검출 한계 (0.1 ng/g 또는 ppb) 는 다양한 표본에 있습니다.
높은 재생 가능성
빠른 ELISA 분석 (시각의 수와 상관없이 1시간 미만)
이 방법은 경쟁적인 컬러 미트릭 ELISA 분석을 기반으로 합니다. AMOZ-BSA는 판 우물 안에 코팅되었습니다. 분석 중에,샘플과 AMOZ 항체가 2차 항체와 함께 추가됩니다.만약 AMOZ 잔해가 샘플에 존재한다면 AMOZ 항체를 위해 경쟁하게 됩니다.따라서 항체가 우물에 부착된 AMOZ-BSA에 결합하는 것을 방지합니다.HRP 기판 (TMB) 을 추가 한 후 발생하는 색상 강도는 샘플의 AMOZ 잔류 농도와 역 관계를 가지고 있습니다.
레건TM푸랄타돈 (AMOZ) ELISA 테스트 킷은 96개의 결정 또는 42개의 샘플을 두 배로 검사할 수 있습니다. (표준을 위해 12개의 웅덩이를 가정합니다.)사용되지 않은 미크로 웰을 포일 봉지에 넣고 원래 패키지에 제공된 건조제로 다시 봉인합니다.2~8°C의 온도에서 보관합니다.
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키트 내용 |
금액 |
저장 |
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AMOZ 코팅판 |
1 x 96 우물 판 (8 우물 x 12 스트립) |
2-8°C |
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AMOZ 표준: 부정적 통제 (백색 캡 튜브) 0.0 5ng/mL (노란 캡 튜브) 0.15ng/mL (오렌지색 캡 튜브) 0.45 ng/mL (핑크 캡 튜브) 1.35 ng/mL (포르풀 캡 튜브) 4.05 ng/mL (블루 캡 튜브) 10 ng/mL (spiking, optional, red cap tube) |
1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL 1.5mL |
2-8°C
2-8°C |
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AMOZ 항체 (항체#1) |
4mL |
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HRP 결합 항체 #2 |
6mL |
2-8°C |
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10X 샘플 추출 버퍼 |
25ml |
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20X 세탁 용액 |
28mL |
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정지 버퍼 |
20mL |
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TMB 서브스트레이트 |
12mL |
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50mM 2-나이트로벤자알데히드 |
20.0 mL |
* 1 개월 이상 키트를 사용하지 않을 경우 항체 # 1 및 HRP 결합 항체 # 2를 - 20 ° C 또는 냉장고에 보관하십시오.
감수성 (탐지 한계)
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표본 종류 |
탐지 한계(ng/g 또는 ppb) |
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생선/삼각류 |
0.1 |
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고기 (닭고기, 쇠고기, 돼지고기 및 가축) |
0.1 |
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달걀/ 달걀 용량 |
0.1 |
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아가씨 |
0.1 |
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분석물질 |
교차 반응성(%) |
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아모스 |
100 |
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AOZ |
<0.04 |
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AHD |
< 0.06 |
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SEM |
< 0.05 |
1미크로타이터 판 판독기 (450nm)
2인큐베이터
3튜브 믹서 (예를 들어 Omni TissueMaster 호모게니저)
4회전 증발기 또는 질소 가스
5.버텍스 믹서 (예를 들어, VWR의 Gneie Vortex 믹서)
6.10, 20, 100 및 1000 mL 파이펫
7다채널 파이펫: 50~300ml (선택)
8에틸 아세테이트
9.0.1 M K2HPO4
10n-헥산 (또는 n-헤프탄)
11.1M NaOH
12.1M HCL
표준에는 푸랄타돈이 들어 있어 조심해
유효기간이 지나면 사용하지 마십시오.
유효기간 내에 동일한 부품 번호가 있는 성분을 제외하고는 다른 키트 또는 롯의 반응제를 섞지 마십시오. 항체와 판은 키트 및 롯 특이입니다.
실험실 온도는 20°~25°C (68°~77°F) 를 유지하도록 노력하십시오. 이는 과도한 냉각, 난방 및/또는 증발을 유발할 수 있으므로 공기 통출장소 아래 또는 근처에서 테스트를 실행하지 마십시오. 또한,직접 햇빛 아래에서 테스트를 실행하지 마십시오.이것은 과도한 열과 증발을 일으킬 수 있기 때문입니다.추운 벤치 윗부분은 잠복 중에 표본 타울 또는 다른 고충 물질의 여러 층을 시험판 아래에 배치함으로써 피해야 합니다..
물의 질이 매우 중요하기 때문에 증류 된 물 또는 비이온화 된 물만을 사용하는지 확인하십시오.
표본이나 반응제를 빈 미크로티터 판에 삐펫으로 넣을 때, 삐펫 끝을 우물 아래쪽 구석에 배치하여 플라스틱과 접촉합니다.
검사판의 잠복 시기는 가능한 한 정확해야합니다. 검사판에 표준을 추가 할 때 일관성있게하십시오. 먼저 표준을 추가하고 샘플을 추가하십시오.
표준 곡선을 손상시킬 위험을 최소화 할 수 있으므로 낮은 농도에서 높은 농도로 순서대로 판에 표준을 추가하십시오.
항상 안정성 을 유지 하기 위해 접시 를 밀폐 된 봉지 에서 건조제 로 냉장 보관 합니다.접시에 있는 동안 방온 (20°C / 68°F) 에 평형되도록 함으로써 접시에 응고가 형성되는 것을 방지합니다..
표본이 적절하게 보관되어 있는지 확인하십시오. 일반적으로 표본은 2-4°C에서 1-2일 이상 냉장 보관해야합니다. 샘플이 더 오래 보관해야하는 경우 최소 -20°C로 냉장합니다.냉동 샘플은 방 온도 (20°C / 68°F) 에서 또는 냉장고에서 사용 하기 전에 녹일 수 있습니다..
1x 샘플 추출 버퍼의 0.5 mL, 증류 물의 3.5 mL, 1 M HCl의 0.5 mL 및 50 mM 2-나이트로벤자알데히드의 20 mL와 동화된 샘플의 1 g를 30 초 동안 소용돌이로 섞는다.
3시간 동안 50°C~55°C에서 잠복합니다. 잠복하는 동안 매 시간마다 5초씩 샘플을 구동합니다.
0.1 M K2HPO4, 0.4 mL 1 M NaOH 및 6 mL 에틸 아세테이트의 5 mL를 첨가하고, 2 분 동안 소용돌이.
방온 (20°C ~ 25°C) 에서 4천 xg에서 5분 동안 원심분리합니다.
에틸 아세테트 초산화물 3 ml (원래 샘플의 0.5 g에 해당) 를 새로운 병에 옮기십시오.추출된 에틸 아세테이트를 4에서 5분 동안 원심화합니다., 000 x g 다시 그리고 상위 유기 층을 얻습니다. 에뮬션이 발생하고 상위 에틸 아세테트 층이 3 ml 미만인 경우 샘플을 85 °C에서 3 분 동안 물 목욕에 잠겨 두십시오.회전 증발기를 사용하여 60-70°C의 수분 목욕장에서 압력을 줄여 샘플을 건조합니다.대안으로, 샘플은 60-70°C의 물 욕조에 질소 가스를 불어 건조 할 수 있습니다.
마른 잔액은 1 ml의 n-헥산 (또는 n-헤프탄) 에 녹여야합니다.
1 ml를 첨가합니다.1X표본 추출 버퍼, 2분 동안 표본을 구동합니다.
샘플을 4,000 x g에서 방온에서 10분 동안 원심분리합니다 (20 ∼ 25°C / 68 ∼ 77°F).
검사용으로 하층 수분층의 50mL를 분자당 사용한다.
참고:희석 요인: 2. 높은 배경을 피하기 위해 용매 빈 샘플을 병렬로 준비하는 것이 좋습니다.에틸 아세테이트의 3 mL를 건조한 상태로 줄여서 휴식 추출 절차를 계속합니다.용매 제어 결과 를 샘플 결과 로부터 빼기
동질화된 표본의 1g를 0.5mL의 1X 샘플 추출 버퍼, 3.5mL의 증류 물, 0.5mL의 1mL HCl 및 20mL의 50mM의 2-질로벤자알데히드로 30초 동안 분화하여 섞는다.
3시간 동안 50°C~55°C에서 잠복합니다. 잠복 기간 동안 매 시간마다 5초씩 샘플을 구동합니다.
0.1 M K2HPO4, 0.4 mL 1 M NaOH 및 6 mL 에틸 아세테이트의 5 mL를 첨가하고, 5 분 동안 소용돌이.
4,000 x g에서 5분 동안 방온에서 원심분리 (20°C / 68°F).
에틸 아세테트 초산화물 3.0 ml (원래 계란 샘플의 0.5 g에 해당) 를 새로운 수포로 옮기십시오.추출된 에틸 아세테이트를 4에서 5분 동안 원심화합니다.1000 x g 다시 상층 유기 층을 얻습니다.) 회전 증발기를 사용하여 60-70 °C의 수분 목욕탕에서 압력을 줄이십시오.표본은 60-70°C의 물 욕조에 질소 가스를 불어 건조할 수 있습니다..
마른 잔액은 1 ml의 n-헥산 (또는 n-헤프탄) 에 녹여야합니다.
1 ml를 첨가합니다.1X샘플 추출 버퍼와 2 분 동안 샘플을 구동.
샘플을 4,000 x g에서 방온에서 10분 동안 원심분리합니다 (20 ∼ 25°C / 68 ∼ 77°F).
검사용으로 하층 수층의 50 ml를 분자당 사용한다.
참고:: 희석 요인: 2. 높은 배경을 피하기 위해 용매 빈 샘플을 병렬로 준비하는 것이 좋습니다.에틸 아세테이트의 3 ml를 건조한 상태로 줄이면서 휴식 절차를 계속합니다.용매 제어 결과 를 샘플 결과 로부터 빼기
계란 샘플의 1g를 0.5 ml의 1X 샘플 추출 버퍼, 3.5 ml의 증류 물, 0.5 ml의 1 M HCl 및 20 ml의 50 mM 2-나이트로벤잘데히드로 혼합하여 2분 동안 회전합니다.
3시간 동안 50°C~55°C에서 잠복합니다. 잠복하는 동안 매 시간마다 5초씩 샘플을 구동합니다.
5mL의 0.1 M K2HPO4, 0.4 mL의 1 M NaOH 및 6 mL의 에틸 아세테이트를 첨가하고, 최대 속도로 5 분 동안 소용돌이를 합니다.
방 온도에서 10분 동안 4,000 x g에서 원심분리 (20°C / 68°F).
에틸 아세테트 초산화물 3.0 mL (원래 꿀 샘플의 0.5 g에 해당) 를 새로운 병에 옮기십시오.추출된 에틸 아세테이트를 4에서 5분 동안 원심화합니다.1000 x g 다시 상층 유기 층을 얻습니다.) 회전 증발기를 사용하여 60-70 °C의 수분 목욕탕에서 압력을 줄이십시오.표본은 60-70°C의 물 욕조에 질소 가스를 불어 건조할 수 있습니다..
마른 잔액은 1 ml의 n-헥산 (또는 n-헤프탄) 에 녹여야합니다.
1 ml를 첨가합니다.1X표본 추출 버퍼와 2분 동안 소용돌이
샘플을 4,000 x g에서 방온에서 10분 동안 원심분리합니다 (20 ∼ 25°C / 68 ∼ 77°F).
50 ml의 하층 수분층을 검사용으로 사용한다.
참고:: 희석 요인: 2. (1) 에틸 아세테트 추출물의 증발 후, 생성된 잔류는 완전히 녹지 않습니다. 그러나 회복률은 손상되지 않습니다 (> 80%).(2) 이 용품의 경우, 우리는 긍정적 인 표본에 대한 표준 0.5 ng/g 또는 ppb를 절단 값으로 사용하는 것이 좋습니다. 부정적인 표본은 상당한 배경 효과를 나타낼 수 있기 때문에 (일부 경우 표준 0.05 ng/g 및 0.15 ng/g)
